Аренда дорожного катка РАСКАТ ДУ-84 (масса 13000 кг, ширина уплотняемой полосы 2000 мм)

Производительность
Асфальт до, м2/час	3 000
Грунт до, м3/час	1000
Конструктивная масса, т	13,00
Рабочий вес (эксплуатационная масса), т	14,00
Количество вибрационных вальцев	1
Вес переднего модуля, т	7,00
Вес заднего модуля,т	7,00
Трансмиссия	гидравлическая
Стояночный тормоз	гидравлический
Статическая линейная нагрузка, передний валец, Н/м	35 000
Нагрузка на колесо	1 750 кг
Частота, Гц/Амплитуда, мм (высокая)	40/0,8
Частота, Гц/Амплитуда, мм (низкая)	24/1,8
Центробежная сила (вынуждающая сила) высокая/низкая кН	150/100
Скорость рабочая, км/час	0 … 5,4
Скорость транспортная, км/час	0 … 8
Привод	обе оси
Водяной бак, л	400
Бак гидравлики, л	162
Масло гидросистемы	МГЕ-46В (аналоги Tellus 46, Hyspin AWS 46)
Угол поперечной устойчивости	15° (27%)
Минимальный радиус поворота по наружному контуру следа, м	7
преодолеваемый уклон	30%
Глубина уплотнения (асфальт/грунт), см	4 — 10 / 15 — 70
Количество проходов (асфальт/грунт)	4 — 10 / 3 — 12
Коэффициент уплотнения (асфальт/грунт)	0,96 — 1,0 / 0,95 — 0,98
Размеры
Ширина вальца, мм	2 000
Ширина уплотняемой полосы, мм	2 000
Диаметр вальца, мм	1 600
Типоразмер шин	11. 00-20
Диаметр пневмоколеса, мм	1 070
Число пневмоколес	4
Длина катка, мм	6 000
Ширина катка, мм	2 400
Высота с кабиной, мм	3 000
Высота без кабины, мм	2 300
База катка (расстояние между осями вальцев), мм	3 100
Клиренс, мм	350
Двигатель
Марка силового агрегата	ЯМЗ-236
Охлаждение двигателя	водяное
Расход топлива, литров/час	24
Напряжение, В	12

Катки дорожные ДУ-47Б, ДУ-84, ДУ-84, ДУ-98, тротуарный каток ДУ-95 производства завода РАСКАТ

Главная РЭМ-25 Каток-уплотнитель Эксплуатационная масса, т: 25,0 Двигатель: ЯМЗ-238Б Мощность двигателя, кВт: 220,0 Ширина упл. полосы, мм: 2 400 ДУ-94 Каток Двигатель: Д-144-09 Масса катка: 7,5 т Ширина уплотняемой полосы: 2000 мм Диаметр вальца: 1600 мм Линейное давление от вибровальца: 375 Н/см RV-1,5 DD Каток Тип: вибрационный двухвальцовый Ширина уплотняемой полосы: 850 мм Назначение:асфальт Масса,т: 1,5 ДУ-82 Каток тротуарный вибрационный Двигатель: KUBOTA D1703 Масса катка: 3500 кг Ширина уплотняемой полосы: 1300 мм Диаметр вибровальца: 800 мм ДУ-95-2 Каток дорожный тротуарный Двигатель: VANGUARD 11HP Рабочий вес: 1150кг Ширина уплотняемой полосы: 750 мм Частота вибровозбудителя: 55 Гц ДУ-97 Каток Двигатель: Д-144-09 Масса катка: 7600 кг Ширина уплотняемой полосы: 1500 мм Диаметр вибровальца: 1070 мм Линейное давление вальца: 280 Н/см ДУ-98 Каток дорожный Двигатель: Д-243 Масса катка: 11500 кг Ширина уплотняемой полосы: 1700 мм Диаметр вибровальца: 1200 мм Линейное давление вальца: 34 кгс/см ДУ-85 Дорожный каток Двигатель: ЯМЗ-236Г2-1 Масса катка: 13 т Ширина уплотняемой полосы: 2000 мм Диаметр вальца: 1600 мм Линейное давление от вальца: 320 Н/см ДУ-84 Каток дорожный Двигатель: ЯМЗ-236Г2-1 Масса катка: 14 т Ширина уплотняемой полосы: 2000 мм Диаметр вальца: 1600 мм Линейное давление от вальца: 320 Н/см Дорожный каток ДУ-100 Двигатель: ЯМЗ-236-Г1/110кВт/ 1700 об/мин. Конструктивная масса: 11т. Ширина вальца: 2000мм. Коэффициент уплотнения: 0,96-1,0 Катки дорожные Контакты: Головной офис в Москве: Москва, ул. Вилиса Лациса, д. 37, к.1 +7 (495) 778-38-40   Адреса и телефоны представительств в регионах вы можете узнать в разделе “Контакты”

интернет-маркетинг для автобизнеса

2

VGS ПУБЛИКАЦИЯ-БЛЕСТЯЩИЕ ПОВЕРХНОСТИ И ОБЪЕМЫ-УПРАЖНЕНИЕ

20 видео

РЕКЛАМА

Ab Padhai каро бина адс ке

Khareedo DN Про и дехо сари видео бина киси ад ки рукаават ке!

Войдите в систему, если вы уже приобрели

Ответьте

Пошаговое решение от экспертов, которое поможет вам избавиться от сомнений и получить отличные оценки на экзаменах.

---

Похожие видео

Диаметр ролика длиной 1 м составляет 84 см. Если требуется 500 полных оборотов, чтобы выровнять игровую площадку, то площадь игровой площадки равна

61725475

Диаметр ролика 84 см, длина 120 см. Чтобы выровнять игровую площадку, требуется 500 полных оборотов. Найдите площадь детской площадки в м2.

203476248

Диаметр ролика 84см, длина 120см. Чтобы выровнять игровую площадку, требуется 500 полных оборотов. Найдите площадь детской площадки в м2?

379895878

Диаметр ролика 84см, длина 120см. Требуется 500 полных рабочих дней, чтобы свернуть и сгладить игровое поле один раз. Найдите площадь игрового поля в квадратных метрах.

444932109

Диаметр роллара 84см, длина 120см. Требуется 500 полных оборотов, чтобы один раз перекатиться по игровой площадке до уровня. Найдите площадь детской площадки в м2

515785105

Текст Решение

Диаметр ролика 84 см, длина 120 см. Требуется 500 полных оборотов, чтобы один раз перекатиться по игровой площадке до уровня. Найдите площадь игровой площадки в м2

515794906

Диаметр ролика 84 см, длина 120 см. Чтобы выровнять игровую площадку, требуется 500 полных оборотов. Найдите площадь детской площадки в м2.

516940055

Диаметр роллара 84см, длина 120см. Требуется 500 полных оборотов, чтобы один раз перекатиться по игровой площадке до уровня. Найдите площадь игровой площадки в м2

517563309

Диаметр роллара 84 см, длина 120 см. Требуется 500 полных оборотов, чтобы один раз перекатиться по игровой площадке до уровня. Найдите площадь игровой площадки в м2

560941695

Диаметр ролика 84 см, длина 120 см. Чтобы выровнять игровую площадку, требуется 500 полных оборотов. Найдите площадь детской площадки в м2.

571223123

Дорожный каток совершает 750 полных оборотов, чтобы проехать один раз и выровнять дорогу. Найдите площадь дороги, если диаметр дорожного катка 84 см, а длина 1 м.

571223997

Диаметр ролика 84 см, длина 120 см. Требуется 500 полных оборотов, чтобы переместиться, чтобы выровнять игровую площадку. Найдите площадь детской площадки в м2.

642590673

Диаметр ролика 84см, длина 120см. Требуется 500 полных оборотов, чтобы переместиться, чтобы выровнять игровую площадку. Найдите площадь детской площадки в м2.

642702702

Диаметр ролика 84см, длина 120см. Чтобы выровнять игровую площадку, требуется 500 полных оборотов. Найдите площадь детской площадки в м2.

642722096

Диаметр ролика 84см, длина 120см. Чтобы выровнять игровую площадку, требуется 500 полных оборотов. Найдите площадь детской площадки в м2.

642909267

Белок семейства IgaA/UmoB из Serratia marcescens Регулирует подвижность, биосинтез капсульных полисахаридов и продукцию вторичных метаболитов

1. Демен А.Л. 1992. Вторичный микробный метаболизм: новые теоретические рубежи для академических кругов, новые возможности для промышленности. Сиба Найден Симп 171:3–16, обсуждение 16–23. [PubMed] [Google Scholar]

2. Coulthurst SJ, Barnard AM, Salmond GP. 2005. Регуляция и биосинтез карбапенемовых антибиотиков у бактерий. Нат Рев Микробиол 3: 295–306. doi: 10.1038/nrmicro1128. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Ou X, Zhang B, Zhang L, Zhao G, Ding X. 2009. Характеристика rrdA , ген белка семейства TetR , участвующий в регуляции вторичного метаболизма у Streptomyces coelicolor . Appl Environ Microbiol 75:2158–2165. doi: 10.1128/АЕМ.02209-08. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Garbeva P, Silby MW, Raaijmakers JM, Levy SB, Boer W. 2011. Транскрипционные и антагонистические ответы Pseudomonas fluorescens Pf0-1 на филогенетически различных бактериальных конкурентов. ИСМЕ J 5: 973–985. doi: 10.1038/ismej.2010.196. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Brader G, Compant S, Mitter B, Trognitz F, Sessitsch A. 2014. Метаболический потенциал эндофитных бактерий. Курр Опин Биотехнолог 27:30–37. doi: 10.1016/j.copbio.2013.09.012. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Тралау Т., Совада Дж., Луч А. 2015. Взгляд на микробиом человека и его метаболизм ксенобиотиков: что известно о его влиянии на физиологию человека? Мнение эксперта Препарат Метаб Токсикол 11: 411–425. дои: 10.1517/17425255.2015.990437. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Wasserman HH, Keggi JJ, McKeon JE. 1961. Серратамолид, продукт метаболизма Serratia . J Am Chem Soc 83:4107–4108. doi: 10.1021/ja01480a046. [CrossRef] [Google Scholar]

8. Мацуяма Т., Согава М., Накагава Ю. 1989. Фрактальный распространяющийся рост Serratia marcescens , который продуцирует поверхностно-активные экзолипиды. FEMS Microbiol Lett 52:243–246. doi: 10.1111/j.1574-6968.1989.tb03630.x. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

9. Williamson NR, Fineran PC, Leeper FJ, Salmond GP. 2006. Биосинтез и регуляция бактериальных продигининов. Нат Рев Микробиол 4:887–899. DOI: 10.1038/nrmicro1531. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Mahlen SD. 2011. Инфекции Serratia : от военных экспериментов к современной практике. Clin Microbiol Rev. 24:755–791. doi: 10.1128/CMR.00017-11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Gerc AJ, Song L, Challis GL, Stanley-Wall NR, Coulthurst SJ. 2012. Насекомое-возбудитель Serratia marcescens Db10 использует гибридную нерибосомную пептидную синтетазу-поликетидсинтазу для производства антибиотика альтиомицина. PLoS один 7:e44673. doi: 10.1371/journal.pone.0044673. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Overhage J, Bains M, Brazas MD, Hancock RE. 2008. Роение Pseudomonas aeruginosa представляет собой сложную адаптацию, приводящую к увеличению продукции факторов вирулентности и устойчивости к антибиотикам. J Бактериол 190: 2671–2679. дои: 10.1128/JB.01659-07. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Lai S, Tremblay J, Deziel E. 2009. Роевая подвижность: многоклеточное поведение, обеспечивающее устойчивость к противомикробным препаратам. Окружающая среда микробиол 11: 126–136. doi: 10.1111/j.1462-2920.2008.01747.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Kadouri DE, Shanks RM. 2013. Идентификация метициллин-резистентного ингибитора Staphylococcus aureus , выделенного из Serratia marcescens . Рез микробиол 164:821–826. doi: 10.1016/j.resmic.2013.06.002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Lapenda JC, Silva PA, Vicalvi MC, Sena KX, Nascimento SC. 2015. Антимикробная активность продигиозина, выделенного из Serratia marcescens UFPEDA 398. World J Microbiol Biotechnol 31: 399–406. doi: 10.1007/s11274-014-1793-y. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Даневчич Т., Борич Везьяк М., Табор М., Зорец М., Стопар Д. 2016. Продигиозин индуцирует аутолизин в активно растущих клетках Bacillus subtilis . Фронт микробиол 7:27. doi: 10.3389/fmicb.2016.00027. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Suryawanshi RK, Patil CD, Koli SH, Hallsworth JE, Patil SV. 2016. Антимикробная активность продигиозина связана с повреждением плазматической мембраны. Нат Прод Рез 31: 572–577. дои: 10.1080/14786419.2016.1195380. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Миядзаки Ю., Ока С., Хара-Хотта Х., Яно И. 1993. Стимуляция и ингибирование фагоцитоза полиморфноядерных лейкоцитов липоаминокислотами, выделенными из Serratia marcescens . ФЭМС Иммунол Мед Микробиол 6: 265–271. дои: 10.1111/j.1574-695X.1993.tb00338.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Shanks RMQ, Stella NA, Lahr RM, Wang S, Veverka TI, Kowalski RP, Liu X. 2012. Серратамолид представляет собой гемолитический фактор, продуцируемый Serratia marcescens . PLoS один 7:e36398. doi: 10.1371/journal.pone.0036398. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Horng YT, Deng SC, Daykin M, Soo PC, Wei JR, Luh KT, Ho SW, Swift S, Lai HC, Williams P. 2002. Белок семейства LuxR SpnR функционирует как негативный регулятор N – ацилгомосерин лактон-зависимое определение кворума в Serratia marcescens . Мол Микробиол 45:1655–1671. doi: 10.1046/j.1365-2958.2002.03117.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Coulthurst SJ, Williamson NR, Harris AK, Spring DR, Salmond GPC. 2006. Метаболическая и регуляторная инженерия Serratia marcescens : имитация опосредованного фагами горизонтального приобретения биосинтеза антибиотиков и способностей к кворум-чувству. микробиология 152: 1899–1911. дои: 10.1099/мик.0.28803-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Таникава Т., Накагава Ю., Мацуяма Т. 2006. Транскрипционный подавляющий регулятор HexS, контролирующий биосинтез продигиозина и серраветтина W1 в Serratia marcescens . Микробиол Иммунол 50: 587–596. doi: 10.1111/j.1348-0421.2006.tb03833.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Williamson NR, Simonsen HT, Harris AK, Leeper FJ, Salmond GP. 2006. Нарушение работы насоса оттока меди (CopA) Serratia marcescens ATCC 274 плейотропно влияет на чувствительность к меди и выработку вторичного метаболита трипиррола, продигиозина. J Ind Microbiol Биотехнология 33:151–158. doi: 10.1007/s10295-005-0040-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Horng YT, Chang KC, Liu YN, Lai HC, Soo PC. 2010. Двухкомпонентная система RssB/RssA регулирует биосинтез трипирролового антибиотика, продигиозина, в Serratia marcescens . Int J Med Microbiol 300:304–312. doi: 10.1016/j.ijmm.2010.01.003. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

25. Каливода Е.Дж., Стелла Н.А., Астон М.А., Фендер Дж.Е., Томпсон П.П., Ковальски Р.П., Шанкс Р.М. 2010. Циклический АМФ отрицательно регулирует продукцию продигиозина с помощью Serratia marcescens . Рез микробиол 161: 158–167. doi: 10.1016/j.resmic.2009.12.004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Shanks RM, Lahr RM, Stella NA, Arena KE, Brothers KM, Kwak DH, Liu X, Kalivoda EJ. 2013. Гомолог Serratia marcescens PigP контролирует биосинтез продигиозина, роевую подвижность и гемолиз и регулируется цАМФ-CRP и HexS. PLoS один 8:e57634. doi: 10.1371/journal.pone.0057634. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Стелла Н.А., Лар Р.М., Братья К.М., Каливода Э.Дж., Хант К.М., Квак Д.Х., Лю Х, Шанкс Р.М. 2015. Serratia marcescens белок циклического AMP-рецептора контролирует транскрипцию EepR, нового регулятора антимикробных вторичных метаболитов. J Бактериол 197: 2468–2478. doi: 10.1128/JB.00136-15. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Dufour A, Furness RB, Hughes C. 1998. Новые гены, которые активируют главный оперон Proteus mirabilis flhDC , контролирующий биогенез жгутиков и роение. Мол Микробиол 29: 741–751. doi: 10.1046/j.1365-2958.1998.00967.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Cano DA, Martinez-Moya M, Pucciarelli MG, Groisman EA, Casadesus J, Garcia-Del Portillo F. 2001. Ответ Salmonella enterica серовара Typhimurium, связанный с ослаблением внутриклеточной пролиферации возбудителя. Заразить иммунитет 69:6463–6474. doi: 10.1128/IAI.69.10.6463-6474.2001. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Коста С.С., Петтинари М.Дж., Мендес Б.С., Антон Д.Н. 2003. Нулевые мутации в основном гене yrfF ( mucM ) не летальны для штаммов rcsB , yojN или rcsC Salmonella enterica серовара Typhimurium. FEMS Microbiol Lett 222:25–32. doi: 10.1016/S0378-1097(03)00221-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Домингес-Берналь Г., Пуччарелли М.Г., Рамос-Моралес Ф., Гарсия-Кинтанилья М., Кано Д.А., Касадесус Х., Гарсия-дель Портильо Ф. 2004. Репрессия фосфорелея RcsC-YojN-RcsB белком IgaA является необходимым условием для Сальмонелла вирулентность. Мол Микробиол 53:1437–1449. doi: 10.1111/j.1365-2958.2004.04213.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Wang Q, Zhao Y, McClelland M, Harshey RM. 2007. Сигнальная система RcsCDB и роевая подвижность у Salmonella enterica серовара Typhimurium: двойная регуляция жгутиковых генов и генов вирулентности SPI-2. J Бактериол 189:8447–8457. дои: 10.1128/JB.01198-07. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Mariscotti JF, García-del Portillo F. 2009 г.. Анализ экспрессии генома выявил модуляцию регулона Salmonella Rcs аттенюатором IgaA. J Бактериол 191: 1855–1867. doi: 10.1128/JB.01604-08. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Miskinyte M, Sousa A, Ramiro RS, de Sousa JA, Kotlinowski J, Caramalho I, Magalhaes S, Soares MP, Gordo I. 2013. Генетическая основа патоадаптации Escherichia coli к макрофагам. PLoS Патог 9:e1003802. doi: 10.1371/journal.ppat.1003802. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Ван Тайн Д., Чолино Дж. Б., Ван Дж., Дюран М. Л., Гилмор М. С. 2016. Новый устойчивый к фагоцитозу штамм , продуцирующий бета-лактамазы расширенного спектра действия, Escherichia coli от кератита. ДЖАМА Офтальмол 134: 1306–1309. doi: 10.1001/jamaophthalmol.2016.3283. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Cano DA, Dominguez-Bernal G, Tierrez A, Garcia-Del Portillo F, Casadesus J. 2002. Регуляция синтеза капсул и подвижности клеток у Salmonella enterica незаменимым геном igaA . Генетика 162: 1513–1523. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

37. Tierrez A, Garcia-del Portillo F. 2004. Мембранный белок IgaA Salmonella модулирует активность регулонов RcsC-YojN-RcsB и PhoP-PhoQ. J Бактериол 186: 7481–7489. doi: 10.1128/JB.186.22.7481-7489.2004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Mariscotti JF, Garcia-Del Portillo F. 2008. Нестабильность Salmonella Сигнальная система RcsCDB при отсутствии аттенюатора IgaA. микробиология 154: 1372–1383. doi: 10.1099/mic.0.2007/015891-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Моргенштейн Р.М., Разер П.Н. 2012. Роль белков Umo и фосфорелея Rcs в роевой подвижности дикого типа и O-антигена ( waaL ) мутанта Proteus mirabilis . J Бактериол 194: 669–676. doi: 10.1128/JB.06047-11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Чо С.Х., Шевчик Дж., Песавенто С., Зитек М., Банцаф М., Рощенко П., Асмар А., Лалу Г., Хов А.К., Леверье П., Ван дер Хенст С., Вертоммен Д., Типас А., Колле Дж. Ф. 2014. Обнаружение напряжения оболочки путем наблюдения за сборкой бета-ствола. Клетка 159: 1652–1664. doi: 10.1016/j.cell.2014.11.045. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Laloux G, Collet JF. 2017. Майор Том наземному управлению: как липопротеины передают внецитоплазматический стресс центру принятия решений в клетке. J Бактериол 199:e00216-. doi: 10.1128/JB.00216-17. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Castelli ME, Vescovi EG. 2011. Путь передачи сигнала Rcs запускается изменениями структуры общего антигена энтеробактерий в Serratia marcescens . J Бактериол 193: 63–74. doi: 10.1128/JB.00839-10. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. McMahon KJ, Castelli ME, Garcia Vescovi E, Feldman MF. 2012. Биогенез везикул наружной мембраны Serratia marcescens терморегулируется и может индуцироваться активацией системы фосфорилирования Rcs. J Бактериол 194:3241–3249. doi: 10.1128/JB.00016-12. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Игучи А., Нагая Й., Прадель Э., Оока Т., Огура Й., Кацура К., Курокава К., Осима К., Хаттори М., Паркхилл Дж., Себайхия М., Култерст С.Дж., Гото Н., Томсон Н.Р., Юбэнк Дж.Дж., Хаяши Т. 2014. Эволюция генома и пластичность Serratia marcescens , важного внутрибольничного патогена с множественной лекарственной устойчивостью. Геном Биол Эвол 6:2096–2110. дои: 10.1093/gbe/evu160. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Wasserman HH, Keggi JJ, McKeon JE. 1962 год. Структура серратамолида. J Am Chem Soc 84:2978–2982. дои: 10.1021/ja00874a028. [CrossRef] [Google Scholar]

46. Сунага С., Ли Х., Сато Ю., Накагава Ю., Мацуяма Т. 2004. Идентификация и характеристика гена pswP , необходимого для параллельного производства продигиозина и серраветтина W1 в Serratia marcescens . Микробиол Иммунол 48:723–728. doi: 10.1111/j.1348-0421.2004.tb03597.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Castelli ME, Fedrigo GV, Clementin AL, Ielmini MV, Feldman MF, Garcia Vescovi E. 2008. Целостность общего антигена энтеробактерий является контрольной точкой биогенеза жгутиков в Serratia marcescens . J Бактериол 190: 213–220. дои: 10.1128/JB.01348-07. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Anderson MT, Mitchell LA, Zhao L, Mobley HLT. 2017. Производство капсул и метаболизм глюкозы определяют физическую форму во время бактериемии Serratia marcescens. mBio 8:e00740-. doi: 10.1128/mBio.00740-17. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Gervais FG, Phoenix P, Drapeau GR. 1992. Ген rcsB , позитивный регулятор биосинтеза колановой кислоты в Escherichia coli , также является активатором экспрессии ftsZ . J Бактериол 174:3964–3971. doi: 10.1128/jb.174.12.3964-3971.1992. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Carballès F, Bertrand C, Bouche JP, Cam K. 1999. Регуляция генов деления клеток Escherichia coli ftsA и ftsZ по двухкомпонентной системе rcsC-rcsB . Мол Микробиол 34:442–450. doi: 10.1046/j.1365-2958.1999.01605.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Коста С.С., Антон Д.Н. 2001. Роль промотора ftsA1p в устойчивости мукоидных мутантов Salmonella enterica к мециллинаму: характеристика мукоидного мутанта нового типа. FEMS Microbiol Lett 200: 201–205. doi: 10.1111/j. 1574-6968.2001.tb10716.x. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

52. Shanks RMQ, Stella NA, Kalivoda EJ, Doe MR, O’Dee DM, Lathrop KL, Guo FL, Nau GJ. 2007. Гомолог Serratia marcescens OxyR опосредует прикрепление к поверхности и образование биопленки. J Бактериол 189: 7262–7272. дои: 10.1128/JB.00859-07. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Каливода Э.Дж., Стелла Н.А., О’Ди Д.М., Нау Г.Дж., Шанкс Р.М. 2008. Циклическая АМФ-зависимая система катаболитной репрессии Serratia marcescens опосредует образование биопленки посредством регуляции фимбрий 1 типа. Appl Environ Microbiol 74:3461–3470. doi: 10.1128/АЕМ.02733-07. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Howery KE, Clemmer KM, Скорее PN. 2016. Регулон Rcs в Proteus mirabilis : влияние на подвижность, образование биопленки и вирулентность. Карр Жене 62: 775–789. doi: 10.1007/s00294-016-0579-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Мадждалани Н., Готтесман С. 2005. Фосфорелея Rcs: сложная система передачи сигнала. Анну Рев Микробиол 59:379–405. doi: 10.1146/annurev.micro.59.050405.101230. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Коновалова А., Перлман Д. Х., Коулз К. Э., Силхави Т. Дж. 2014. Трансмембранный домен экспонированного на поверхности липопротеина внешней мембраны RcsF проходит через просвет белков бета-бочонка. Proc Natl Acad Sci U S A 111:E4350–E4358. doi: 10.1073/pnas.1417138111. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Готтесман С., Стаут В. 1991. Регуляция синтеза капсульных полисахаридов у Escherichia coli K12. Мол Микробиол 5: 1599–1606. doi: 10.1111/j.1365-2958.1991.tb01906.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Стелла Н.А., Каливода Э.Дж., О’Ди Д.М., Нау Г.Дж., Шанкс Р.М. 2008. Катаболитное подавление производства жгутиков с помощью Serratia marcescens . Рез микробиол 159: 562–568. doi: 10.1016/j.resmic.2008.07.003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Хоарау Г., Мукерджи П.К., Гауэр-Руссо С., Хагер С., Чандра Дж., Ретуэто М.А., Нойт С., Вермейр С., Клементе Дж., Коломбель Дж.Ф., Фудзиока Х., Пулен Д., Сендид Б., Ганнум М.А. 2016. Взаимодействия бактериома и микобиома подчеркивают микробный дисбактериоз при семейной болезни Крона. mBio 7:e01250-. doi: 10.1128/mBio.01250-16. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Бертани Г. 1951. Исследования лизогенеза. I. Способ высвобождения фага лизогенной Escherichia coli . J Бактериол 62: 293–300. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

61. Adams MH. 1959. Бактериофаги. Interscience Publishers, Inc., Нью-Йорк, штат Нью-Йорк. [Google Scholar]

62. Берк Д., Доусон Д., Стернс Т. 2000. Методы генетики дрожжей: учебное пособие лаборатории Колд-Спринг-Харбор. Лабораторный пресс Колд-Спринг-Харбор, Колд-Спринг-Харбор, Нью-Йорк. [Google Scholar]

63. Kulasekara HD, Ventre I, Kulasekara BR, Lazdunski A, Filloux A, Lory S. 2005. Новая двухкомпонентная система контролирует экспрессию Pseudomonas aeruginosa фимбриальные чашечковые гены. Мол Микробиол 55:368–380. doi: 10.1111/j.1365-2958.2004.04402.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Чанг С.Л., Рубин Э.Дж. 2002. Конструирование транспозона на основе морской пехоты для мечения эпитопов и геномного нацеливания. Ген 296: 179–185. doi: 10.1016/S0378-1119(02)00856-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. О’Тул Г.А., Пратт Л.А., Уотник П.И., Ньюман Д.К., Уивер В.Б., Колтер Р. 1999. Генетические подходы к изучению биопленок. Методы Энзимола 310:91–109. doi: 10.1016/S0076-6879(99)10008-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Kalivoda EJ, Horzempa J, Stella NA, Sadaf A, Kowalski RP, Nau GJ, Shanks RM. 2011. Новые векторные инструменты с маркером устойчивости к гигромицину для использования с условно-патогенными микроорганизмами. Мол Биотехнолог 48:7–14. doi: 10.1007/s12033-010-9342-x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Shanks RM, Caiazza NC, Hinsa SM, Toutain CM, O’Toole GA. 2006. Saccharomyces cerevisiae Набор молекулярных инструментов для манипулирования генами грамотрицательных бактерий. Appl Environ Microbiol 72: 5027–5036. doi: 10.1128/AEM.00682-06. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

68. Shanks RM, Kadouri DE, MacEachran DP, O’Toole GA. 2009. Новые инструменты рекомбинации дрожжей для бактерий. Плазмида 62:88–97. doi: 10.1016/j.plasmid.2009.05.002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

69. Масуко Т., Минами А., Ивасаки Н., Мадзима Т., Нисимура С., Ли Ю.С. 2005. Анализ углеводов фенол-сернокислотным методом в формате микропланшета. Анальная биохимия 339: 69–72. doi: 10.1016/j.ab.2004.12.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

70. Миллер В.Л., Мекаланос Дж.Дж. 1988 год. Новый суицидальный вектор и его использование для создания инсерционных мутаций: осморегуляция белков внешней мембраны и детерминант вирулентности у Vibrio cholerae требует toxR . J Бактериол 170:2575. doi: 10.1128/jb.170.6.2575-2583.1988. [PMC бесплатная статья] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

71. Каливода Э.Дж., Братья К.М., Стелла Н.А., Шмитт М.Дж., Шанкс Р.М. 2013. Бактериальная активность циклической АМФ-фосфодиэстеразы координирует образование биопленки. PLoS один 8:e71267. doi: 10.1371/journal.pone.0071267. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

72. Нейдхардт ФК. 1996. Escherichia coli и Salmonella : клеточная и молекулярная биология. ASM Press, Вашингтон, округ Колумбия. [Google Scholar]

73. Olonisakin TF, Li H, Xiong Z, Kochman EJ, Yu M, Qu Y, Hulver M, Kolls JK, St Croix C, Doi Y, Nguyen MH, Shanks RM, Mallampalli RK, Kagan VE , Рэй А., Сильверстайн Р.Л., Рэй П., Ли Дж.С. 2016. CD36 обеспечивает защиту хозяина от внутрилегочной инфекции Klebsiella pneumoniae за счет повышения чувствительности к ЛПС и фагоцитоза макрофагов. J заразить Dis 214: 1865–1875. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

74.