Helmut fsc200 отзывы: Электрический плиткорез Helmut FSC200 купить с доставкой. Отзывы. Рекомендации. Аксессуары.

Helmut FSC200 характеристики, видео обзор, отзывы

  • Электро и бензопилы
  • Helmut
  • Тип алмазная
  • Конструкция станок
  • Тип двигателя электрический
  • Мощность 1 000 Вт
  • Диаметр диска 200 мм
  • Длина опорной поверхности 400 мм
  • Угол наклона 45 градусов
  • Ширина опорной поверхности 500 мм
  • Диаметр посадочного отверстия 25 мм
  • Плавная регулировка скорости Нет
  • Показать все

Видео обзоры Helmut FSC200

Характеристики Helmut FSC200

Общие характеристики *

Тип		алмазная
Конструкциястанок
Тип двигателяэлектрический
Мощность1 000 Вт

Функции и возможности *

Диаметр диска200 мм
Длина опорной поверхности400 мм
Угол наклона45 градусов
Ширина опорной поверхности500 мм
Диаметр посадочного отверстия 25 мм
Плавная регулировка скоростиНет
Тормоз цепиНет
Количество скоростей1
Высота пропила39 мм
Скорость вращения2 950 об/мин

Дополнительная информация *

Вес11. 2 кг
Блокировка шпинделяНет
ПодсветкаНет
Плавный пускНет
Торможение двигателяНет
АнтивибрацияНет
ПылесборникНет
Лазерный маркерНет
Возможность подключения пылесосаНет
Электронная защита двигателяНет

* Точные характеристики уточняйте у продавца.

Отзывы о Helmut FSC200

Другие модели

  • Helmut ST350-800

  • Helmut ST350-1500

  • Helmut ST400-900N

  • Helmut FS200H

  • Helmut FS230H

  • Helmut FSC180

  • Helmut FS200

  • Helmut FS230

  • Helmut FS-250H

  • Helmut FS300

ᐅ Плиткорез Helmut FS200 отзывы — 1 честных отзыва покупателей о Плиткорезы и камнерезы Плиткорез Helmut FS200

Достоинства

Недостатки

Комментарий

Оценка

Принимаю условия предоставления данных.

  • мощность 800 Вт
  • диаметр диска 200 мм
  • длина опорной поверхности 1020 мм
  • вес 30 кг

Средний рейтинг Плиткорез Helmut FS200 – 3
Всего известно о 1 отзывах о Плиткорез Helmut FS200

Ищете положительные и негативные отзывы о Плиткорез Helmut FS200?

Из 11 источников мы собрали 1 отрицательных, негативных и положительных отзывов.

Мы покажем все достоинства и недостатки Плиткорез Helmut FS200 выявленные при использовании пользователями. Мы ничего не скрываем и размещаем все положительные и отрицательные честные отзывы покупателей о Плиткорез Helmut FS200, а также предлагаем альтернативные товары аналоги. А стоит ли покупать – решение только за Вами!

Самые выгодные предложения по Плиткорез Helmut FS200

 
 

Информация об отзывах обновлена на 04. 04.2023

Написать отзыв

Имя скрыто, 03.08.2019

Достоинства: Намного лучше чем резать болгаркой

Нет пыли правда много брызг по сторонам

Недостатки: через пару дней отвалилась сварка на ножках
тяжело выставить плитку дя ровного реза
подклинивают звенья кожуха при резе и поучаются сколы
когда держишь половину плитку при пиле мешает двигатель и не знаеь с какой стороны ее взят

Комментарий: Все познается в сравнении

 


Общие характеристики
Мощность800 Вт
Обработка
Высота пропила35 мм
Диаметр диска200 мм
Диаметр посадочного отверстия25. 4 мм
Угол наклона45 град.
Производительность
Скорость вращения 2950 об/мин
Особенности, комплектация, габариты
Вес30 кг

Производители

  • ЗУБР3
  • STAYER3
  • RUBI2
  • Husqvarna2
  • MTX2
  • Irwin1
  • Battipav1
  • Helmut1
  • Maktec1
  • Fortezzo1
  • Hammerflex1
  • Einhell1
  • Archimedes1
  • Sturm!1
  • Messer1
  • Makita1
  • Wester1
  • РемоКолор1

Показать еще

Тестирование стратегий сборки геномов Francisella tularensis для проведения анализа эволюционного сохранения геномных структур

1. Ellis J, Oyston PCF, Green M, Titball RW. Туляремия. Clin Microbiol Rev. 2002;15(4):631–646. doi: 10.1128/CMR.15.4.631-646.2002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Тарнвик А., Берглунд Л. Туляремия. Eur Respir J. 2003;21(2):361–373. doi: 10.1183/09031936.03.00088903. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

3. Moinet M, Decors A, Mendy C, Faure E, Durand B, Madani N. Пространственно-временная динамика туляремии в дикой природе Франции: 2002-2013 гг. Пред. Вет. мед. 2016; 130:33–40. doi: 10.1016/j.prevetmed.2016.05.015. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Karlsson J, Prior RG, Williams K, Lindler L, Brown KA, Chatwell N, Hjalmarsson K, Loman N, Mack KA, Pallen M, Popek M, Sandström G, Sjöstedt A, Svensson T, Tamas I, Andersson SGE, Wren BW, Oyston PCF, Titball RW. Секвенирование генома штамма Schu 4 Francisella tularensis выявило пути метаболизма шикимата и пурина, которые являются мишенями для создания рационально аттенуированной ауксотрофной вакцины.

Микроб Комп Геномика. 2000;5(1):25–39. doi: 10.1089/109065

145249. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Пузаков М.В., Пузакова Л.В., Чересиз С.В. Анализ транспозонов IS630/Tc1/mariner в геноме тихоокеанской устрицы Crassostrea gigas. Дж Мол Эвол. 2018;86(8):566–580. doi: 10.1007/s00239-018-9868-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Larsson P, Oyston PCF, Chain P, Chu MC, Duffield M, Fuxelius HH, Garcia E, Hälltorp G, Johansson D, Isherwood KE, Karp PD, Larsson E, Лю Ю., Мичелл С., Прайор Дж., Прайор Р., Малфатти С., Шёстедт А., Свенссон К., Томпсон Н., Вергез Л., Вагг Дж. К., Рен Б. В., Линдлер Л. Е., Андерссон С. Г. Э., Форсман М., Титбол Р. В. Полная последовательность генома Francisella tularensis, возбудителя туляремии. Нат Жене. 2005;37(2):153–159.. doi: 10.1038/ng1499. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Rohmer L, Fong C, Abmayr S, Wasnick M, Larson Freeman T, Radey M, Guina T, Svensson K, Hayden HS, Jacobs M, Gallagher LA, Manoil C , Эрнст Р.

К., Дрис Б., Бакли Д., Хауген Э., Бови Д., Чжоу Ю., Чанг Дж., Леви Р., Лим Р., Джиллетт В., Гюнтенер Д., Канг А., Шаффер С.А., Тейлор Г., Чен Дж., Галлис Б., Д. Аргенио Д.А., Форсман М., Олсон М.В., Гудлетт Д.Р., Каул Р., Миллер С.И., Бриттнахер М.Дж. Сравнение геномов Francisella tularensis выявляет эволюционные события, связанные с появлением патогенных для человека штаммов. Геном биол. 2007;8(6):R102. doi: 10.1186/gb-2007-8-6-r102. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Свенссон К., Сьёдин А., Быстрём М., Гранберг М., Бриттнахер М.Дж., Ромер Л., Джейкобс М.А., Симс-Дэй Э.Х., Леви Р., Чжоу Ю., Хайден Х.С., Лим Р., Чанг Дж., Гюнтенер Д., Кан А. , Haugen E, Gillett W, Kaul R, Forsman M, Larsson P, Johansson A. Последовательность генома штамма FSC200 подвида Francisella tularensis holarctica, выделенного от ребенка с туляремией. J Бактериол. 2012;194(24):6965–6966. doi: 10.1128/JB.01040-12. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Ларсон М.А., Фей П.Д., Бартлинг А.М., Ивен П.С., Демпси М.П., ​​Франческони С.К., Хинрихс С.Х. Молекулярное типирование Francisella tularensis с использованием дифференциальной амплификации последовательностей вставок. Дж. Клин Микробиол. 2011;49(8): 2786–2797. doi: 10.1128/JCM.00033-11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Chen YC, Liu T, Yu CH, Chiang TY, Hwang CC. Влияние смещения GC в данных секвенирования следующего поколения на сборку генома de novo. ПЛОС Один. 2013;8(4):e62856. doi: 10.1371/journal.pone.0062856. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Cheung MS, Down TA, Latorre I, Ahringer J. Систематическая погрешность данных высокопроизводительного секвенирования и ее коррекция с помощью BEADS. Нуклеиновые Кислоты Res. 2011;39(15):e103. doi: 10.1093/nar/gkr425. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Benjamini Y, Speed ​​TP. Обобщение и исправление систематической ошибки содержания GC при высокопроизводительном секвенировании. Нуклеиновые Кислоты Res. 2012;40(10):e72. doi: 10.1093/nar/gks001. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Aird D, Ross MG, Chen WS, Danielsson M, Fennell T, Russ C, Jaffe DB, Nusbaum C, Gnirke A. Анализ и минимизация ПЦР систематическая ошибка амплификации в библиотеках секвенирования Illumina. Геном биол. 2011;12(2):R18. doi: 10.1186/gb-2011-12-2-r18. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Марин Р., Полсон С.В., Равель Дж., Хатфулл Г., Рассел Д., Салливан М., Сайед Ф., Дюма М., Уоммак К.Е. Оценка протокола транспозазы для быстрого создания библиотек высокопроизводительного секвенирования дробовика из нанограммовых количеств ДНК. Appl Environ Microbiol. 2011;77(22):8071–8079. doi: 10.1128/AEM.05610-11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Lan JH, Yin Y, Reed EF, Moua K, Thomas K, Zhang Q. Влияние трех методов построения библиотеки Illumina на смещение GC и генотип HLA вызов. Хум Иммунол. 2015;76(2–3):166–175. doi: 10.1016/j.humimm.2014.12.016. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Wassenaar TM, et al. Сравнение геномов бактериальных патогенов. Геном Дин. 2009; 6: 1–20. doi: 10.1159/000235759. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Хильдебранд Ф., Мейер А., Эйр-Уокер А. Доказательства отбора по геномному содержанию GC в бактериях. Генетика PLoS. 2010;6(9):e1001107. doi: 10.1371/journal.pgen.1001107. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Nano FE, Schmerk C. Остров патогенности Francisella. Энн Н.Ю. Академия наук. 2007;1105(1):122–137. дои: 10.1196/летопись.1409.000. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Nano FE, Zhang N, Cowley SC, Klose KE, Cheung KKM, Roberts MJ, Ludu JS, Letendre GW, Meierovics AI, Stephens G, Elkins KL. Островок патогенности Francisella tularensis необходим для внутримакрофагального роста. J Бактериол. 2004;186(19):6430–6436. doi: 10.1128/JB.186.19.6430-6436. 2004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Clemens DL, Lee BY, Horwitz MA. Секреторная система францицеллы VI типа. Front Cell Infect Microbiol. 2018;8:121. дои: 10.3389/fcimb.2018.00121. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Sohn JI, Nam JW. Настоящее и будущее полногеномной сборки de novo. Кратко Биоинформ. 2018;19(1):23–40. doi: 10.1093/bib/bbw096. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Quainoo S, Coolen JPM, van Hijum SAFT, Huynen MA, Melchers WJG, van Schaik W, Wertheim HFL. Полногеномное секвенирование бактериальных патогенов: будущее анализа внутрибольничных вспышек. Clin Microbiol Rev. 2017;30(4):1015–1063. doi: 10.1128/CMR.00016-17. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Перепел М.А., и соавт. Рассказ о трех платформах для секвенирования нового поколения: сравнение секвенаторов Ion Torrent, Pacific Biosciences и Illumina MiSeq. Геномика BMC. 2012;13:341. дои: 10. 1186/1471-2164-13-341. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Судья К., Хант М., Рейтер С., Трейси А., Куэйл М.А., Паркхилл Дж., Пикок С.Дж. Сравнение программного обеспечения для сборки бактериального генома для данных MinION и его применимости в медицинской микробиологии. Микроб Геном. 2016;2(9):e000085. doi: 10.1099/mgen.0.000085. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Giordano F, Aigrain L, Quail MA, Coupland P, Bonfield JK, Davies RM, Tischler G, Jackson DK, Keane TM, Li J, Yue JX, Liti G, Durbin R, Ning Z. Сборки генома дрожжей de novo с платформ MinION, PacBio и MiSeq. Научный доклад 2017; 7 (1): 3935. doi: 10.1038/s41598-017-03996-z. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Pfeiffer F, Gröber C, Blank M, Händler K, Beyer M, Schultze JL, Mayer G. Систематическая оценка частоты ошибок и их причин в коротких выборках в секвенировании следующего поколения. Научный доклад 2018; 8 (1): 10950. doi: 10.1038/s41598-018-29325-6. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Tyler AD, Mataseje L, Urfano CJ, Schmidt L, Antonation KS, Mulvey MR, Corbett CR. Оценка устройства для секвенирования MinION от Oxford Nanopore для приложений секвенирования всего генома микробов. Научный доклад 2018; 8 (1): 10931. doi: 10.1038/s41598-018-29334-5. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Симпсон Дж. Т., Вонг К., Джекман С. Д., Шейн Дж. Э., Джонс С. Дж. М., Бирол И. ABySS: параллельный ассемблер для коротких данных последовательностей чтения. Геном Res. 2009 г.;19(6):1117–1123. doi: 10.1101/gr.089532.108. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Coil D, Jospin G, Darling AE. A5-miseq: обновленный конвейер для сборки микробных геномов из данных Illumina MiSeq. Биоинформатика. 2015;31(4):587–589. doi: 10.1093/биоинформатика/btu661. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Peng Y, et al. IDBA – Практический итеративный ассемблер de Bruijn Graph De Novo. Берлин: Спрингер; 2010. [Google Scholar]

31. Зимин А.В., Марсе Г., Пуйу Д., Робертс М., Зальцберг С.Л., Йорк Дж.А. Сборщик генома MaSuRCA. Биоинформатика. 2013;29(21): 2669–2677. doi: 10.1093/биоинформатика/btt476. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Chevreux B, Wetter T, Suhai S. Сборка последовательности генома с использованием сигналов трассировки и дополнительной информации о последовательности. Вычислительная научная биология. 1999; 99: 45–56. [Google Scholar]

33. Симпсон Дж. Т., Дурбин Р. Эффективная сборка больших геномов de novo с использованием структур сжатых данных. Геном Res. 2012;22(3):549–556. doi: 10.1101/gr.126953.111. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Антипов Д., Коробейников А., Маклин Дж.С., Певзнер П.А. hybridSPAdes: алгоритм гибридной сборки коротких и длинных чтений. Биоинформатика. 2016;32(7):1009–1015. doi: 10.1093/биоинформатика/btv688. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Банкевич А., Нурк С., Антипов Д., Гуревич А. А., Дворкин М., Куликов А. С., Лесин В. М., Николенко С. И., Фам С., Пржибельский А. Д., Пышкин А.В., Сироткин А.В., Вяхи Н., Теслер Г., Алексеев М.А., Певзнер П.А. SPAdes: новый алгоритм сборки генома и его приложения для секвенирования отдельных клеток. J Компьютерная биология. 2012;19(5): 455–477. doi: 10.1089/cmb.2012.0021. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Bushnell, B., Tadpole, ассемблер на основе kmer с дополнительными возможностями исправления ошибок и расширения операций чтения. https://jgi.doe.gov/data-and-tools/bbtools/bb-tools-user-guide/tadpole-guide/, 2015.

37. De Maio N, et al. Сравнение технологий секвенирования длинных считываний в гибридной сборке сложных бактериальных геномов. Микроб Геном. 2019;5(9):e000294. doi: 10.1099/mgen.0.000294. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Goldstein S, Beka L, Graf J, Klassen JL. Оценка стратегий сборки разнообразных бактериальных геномов с использованием долговременного секвенирования MinION. Геномика BMC. 2019;20(1):23. doi: 10.1186/s12864-018-5381-7. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Салтыкова А., Вуйтс В., Маттеус В., Бертран С., Роозенс NHC, Маршал К., де Кеерсмакер SCJ. Сравнение рабочих процессов субтипирования на основе SNP для бактериальных изолятов с использованием данных WGS, примененных к серотипу Salmonella enterica Typhimurium и серотипам 1,4,[5],12:i. ПЛОС Один. 2018;13(2):e0192504. doi: 10.1371/journal.pone.0192504. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Sović I, et al. Оценка гибридных и негибридных методов сборки нанопор de novo. Биоинформатика (Оксфорд, Англия). 2016;32(17):2582–9. 10.1093/биоинформатика/btw237. [PubMed]

41. De Coster W, et al. NanoPack: визуализация и обработка длинных данных секвенирования. Биоинформатика. 2018;34(15):2666–2669. doi: 10.1093/биоинформатика/bty149. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Сович И., Шикич М. , Вилм А., Фенлон С.Н., Чен С., Нагараджан Н. Быстрое и чувствительное картирование считываний секвенирования нанопор с помощью GraphMap. Нац коммун. 2016;7(1):11307. doi: 10.1038/ncomms11307. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Гуревич А. и соавт. QUAST: инструмент оценки качества сборки генома. Биоинформатика (Оксфорд, Англия) 2013; 29:1072–1075. doi: 10.1093/биоинформатика/btt086. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Wick RR, Schultz MB, Zobel J, Holt KE. Bandage: интерактивная визуализация сборок генома de novo. Биоинформатика. 2015;31(20):3350–3352. дои: 10.1093/биоинформатика/btv383. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Jeong H, Lee DH, Ryu CM, Park SH. На пути к полному секвенированию бактериального генома за счет комбинированного использования нескольких платформ секвенирования следующего поколения. J Microbiol Biotechnol. 2016;26(1):207–212. doi: 10.4014/jmb.1507.07055. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Koren S, Walenz BP, Berlin K, Miller JR, Bergman NH, Phillippy AM. Canu: масштабируемая и точная сборка с длительным чтением с помощью адаптивного взвешивания k-меров и разделения повторов. Геном Res. 2017;27(5):722–736. doi: 10.1101/gr.215087.116. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Уокер Б.Дж., Абил Т., Ши Т., Прист М., Абуэльель А., Шактикумар С., Куомо К.А., Зенг К., Вортман Дж., Янг С.К., Эрл А.М. Pilon: интегрированный инструмент для комплексного обнаружения микробных вариантов и улучшения сборки генома. ПЛОС Один. 2014;9(11):e112963. doi: 10.1371/journal.pone.0112963. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Колмогоров М., Юань Дж., Линь Ю., Певзнер П.А. Сборка длинных, подверженных ошибкам операций чтения с использованием графов повторов. Нац биотехнолог. 2019;37(5):540–546. doi: 10.1038/s41587-019-0072-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Wick RR, Judd LM, Gorrie CL, Holt KE. Unicycler: разрешение сборок бактериального генома из коротких и длинных чтений секвенирования. PLoS Comput Biol. 2017;13(6):e1005595. doi: 10.1371/journal.pcbi.1005595. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Михеенко А., Пржибельский А., Савельев В., Антипов Д., Гуревич А. Оценка сборки универсального генома с помощью QUAST-LG. Биоинформатика. 2018;34(13):i142–i150. doi: 10.1093/биоинформатика/bty266. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Powers JG, Weigman VJ, Shu J, Pufky JM, Cox D, Hurban P. Эффективная и точная сборка всего генома и профилирование метилома E. coli. Геномика BMC. 2013;14(1):675. дои: 10.1186/1471-2164-14-675. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Карлссон Э., Головлев И., Ларкерид А., Гранберг М., Ларссон Э., Орман С., Немцевиц М., Бердселл Д., Вагнер Д.М., Форсман М., Йоханссон A. Клональность устойчивости к эритромицину у Francisella tularensis. J Антимикробная химиотерапия. 2016;71(10):2815–2823. дои: 10.1093/JAC/DKW235. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Feschotte C, Jiang N, Wessler SR. Мобильные элементы растений: где генетика встречается с геномикой. Нат Рев Жене. 2002;3(5):329–341. doi: 10.1038/nrg793. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Wessler SR, Bureau TE, White SE. LTR-ретротранспозоны и клещи: важные игроки в эволюции геномов растений. Curr Opin Genet Dev. 1995;5(6):814–821. doi: 10.1016/0959-437X(95)80016-X. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

55. Прайор Р.Г., Классон Л., Ларссон П., Уильямс К., Линдлер Л., Шостедт А., Свенссон Т., Тамас И., Рен Б.В., Ойстон П.К.Ф., Андерссон С.Г.Э., Титбол Р.В. Предварительный анализ и аннотация частичной последовательности генома штамма Francisella tularensis Schu 4. J Appl Microbiol. 2001;91(4):614–620. doi: 10.1046/j.1365-2672.2001.01499.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Юинг Б., Грин П. Базовый вызов трасс автоматического секвенсора с использованием phred. II Вероятность ошибки. Геном Res. 1998;8(3):186–194. doi: 10.1101/gr.8.3.186. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Ewing B, Hillier L, Wendl MC, Green P. Базовый вызов следов автоматического секвенсора с использованием phred. I Оценка точности. Геном Res. 1998;8(3):175–185. doi: 10.1101/gr.8.3.175. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Larson MA, et al. Francisella tularensis Подтип A.II Геномная пластичность по сравнению с подтипом A.I. ПЛОС Один. 2014;10(4):e0124906. doi: 10.1371/journal.pone.0124906. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Винсент А.Т., Дером Н., Бойл Б., Калли А.И., Шаретт С.Дж. Секвенирование следующего поколения (NGS) в микробиологическом мире: как максимально эффективно использовать свои деньги. J Микробиологические методы. 2017; 138:60–71. doi: 10.1016/j.mimet.2016.02.016. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Heydari M, Miclotte G, van de Peer Y, Fostier J. Исправление ошибок Illumina вблизи высоко повторяющихся участков ДНК улучшает сборку генома de novo. Биоинформатика BMC. 2019;20(1):298. doi: 10.1186/s12859-019-2906-2. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Rang FJ, Kloosterman WP, de Ridder J. От волнистой линии к паре оснований: вычислительные подходы для повышения точности считывания секвенирования нанопор. Геном биол. 2018;19(1):90. doi: 10.1186/s13059-018-1462-9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Seth-Smith HMB, Bonfiglio F, Cuénod A, Reist J, Egli A, Wüthrich D. Оценка протоколов быстрой подготовки библиотеки для полногеномного секвенирования на основе расследование вспышки. Фронт общественного здравоохранения. 2019;7:241. doi: 10.3389/fpubh.2019.00241. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Grutzke J, et al. Рыбалка в супе – обнаружение патогенов в безопасности пищевых продуктов с использованием метабаркодирования и метагеномного секвенирования. Фронт микробиол. 2019;10:1805. doi: 10.3389/fmicb.2019.01805. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Guzman C, D’Orso I. CIPHER: гибкая и обширная платформа рабочего процесса для комплексного анализа данных секвенирования следующего поколения и предсказания регуляторных элементов генома. Биоинформатика BMC. 2017;18(1):363. дои: 10.1186/s12859-017-1770-1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Ширмер М., Иджаз УЗ, Д’Амор Р., Холл Н., Слоан В.Т., Айва С. Взгляд на систематические ошибки и ошибки секвенирования при секвенировании ампликонов с помощью Платформа Illumina MiSeq. Нуклеиновые Кислоты Res. 2015;43(6):e37. doi: 10.1093/nar/gku1341. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Bolger AM, Lohse M, Usadel B. Trimmomatic: гибкий триммер для данных последовательности Illumina. Биоинформатика. 2014;30(15):2114–2120. дои: 10.1093/биоинформатика/btu170. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Schmieder R, Edwards R. Контроль качества и предварительная обработка наборов метагеномных данных. Биоинформатика. 2011;27(6):863–864. doi: 10.1093/биоинформатика/btr026. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

68. Нуманагич И., Гёккая А.С., Чжан Л., Бергер Б., Алкан С., Хач Ф. Быстрая характеристика сегментных дупликаций в сборках генома. Биоинформатика. 2018;34(17):i706–i714. дои: 10.1093/биоинформатика/bty586. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

69. Буш А., Томас П., Зушантке Э., Брендебах Х., Нойберт К., Грюцке Дж., Аль Дахук С., Петерс М., Хотцель Х., Нойбауэр Х., Томасо Х. Пересматривая Francisella tularensis subsp. holarctica, Возбудитель туляремии в Германии с помощью биоинформатики: новые взгляды на структуру генома, метилирование ДНК и сравнительный филогенетический анализ. Фронт микробиол. 2018;9:344. doi: 10.3389/fmicb.2018.00344. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

70. Махиллон Дж., Чендлер М. Последовательности вставки. Microbiol Mol Biol Rev. 1998;62(3):725–774. doi: 10.1128/MMBR. 62.3.725-774.1998. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

71. Doak TG, Doerder FP, Jahn CL, Herrick G. Предлагаемое суперсемейство генов транспозаз: транспозоноподобные элементы в реснитчатых простейших и общий “D35E “мотив. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994;91(3):942–946. doi: 10.1073/pnas.91.3.942. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

72. Чао М.С., Абель С., Дэвис Б.М., Уолдор М.К. Дизайн и анализ экспериментов по секвенированию вставки транспозона. Nat Rev Microbiol. 2016;14(2):119–128. doi: 10.1038/nrmicro.2015.7. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

73. Партридж С.Р., Квонг С.М., Ферт Н., Дженсен С.О. Мобильные генетические элементы, связанные с устойчивостью к противомикробным препаратам. Clin Microbiol Rev. 2018;31(4). 10.1128/CMR.00088-17. [Бесплатная статья PMC] [PubMed]

74. Галлахер Л.А., Рэймидж Э., Джейкобс М.А., Каул Р., Бриттнахер М., Манойл С. Обширная библиотека транспозонных мутантов Francisella novicida, суррогата биологического оружия. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007;104(3):1009–1014. doi: 10.1073/pnas.0606713104. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

75. Kingry LC, Petersen JM. Сравнительный обзор Francisella tularensis и Francisella novicida. Front Cell Infect Microbiol. 2014; 4:35. doi: 10.3389/fcimb.2014.00035. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

76. Sjodin A, et al. Геномная характеристика рода Francisella раскрывает схожие эволюционные пути патогенов млекопитающих и рыб. Геномика BMC. 2012;13(1):268. дои: 10.1186/1471-2164-13-268. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

77. Альтшул С.Ф., Мэдден Т.Л., Шеффер А.А., Чжан Дж., Чжан З., Миллер В., Липман Д.Дж. Gapped BLAST и PSI-BLAST: новое поколение программ поиска белковых баз данных. Нуклеиновые Кислоты Res. 1997;25(17):3389–3402. doi: 10.1093/нар/25.17.3389. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

78. Отто П., Кольманн Р., Мюллер В., Юлих С. , Гайс Г., Гатерманн С.Г., Петерс М., Вольф П.Дж., Карлссон Э., Форсман М., Миртеннес K, Tomaso H. Передача Francisella tularensis subsp. от зайца человеку. Голарктика, Германия. Эмердж Инфекция Дис. 2015;21(1):153–155. doi: 10.3201/eid2101.131837. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

79. Ларкерид А., Миртеннас К., Карлссон Э., Двибеди К.К., Форсман М., Ларссон П., Йоханссон А., Шодин А. CanSNPer: иерархический классификатор генотипов клональных патогенов. Биоинформатика. 2014;30(12):1762–1764. doi: 10.1093/биоинформатика/btu113. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

80. Маккарти А. Секвенирование ДНК третьего поколения: технология одиночной молекулы Pacific Biosciences в реальном времени. хим. биол. 2010;17(7):675–676. doi: 10.1016/j.chembiol.2010.07.004. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

81. Леггетт Р.М., Хевенс Д., Каккамо М., Кларк М.Д., Дэйви Р.П. NanoOK: многоэтапный анализ выравнивания данных секвенирования нанопор, профилей качества и ошибок. Биоинформатика. 2016;32(1):142–144. doi: 10.1093/биоинформатика/btv540. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

82. Chin CS, Alexander DH, Marks P, Klammer AA, Drake J, Heiner C, Clum A, Copeland A, Huddleston J, Eichler EE, Turner SW, Корлах Дж. Негибридные, готовые сборки микробного генома на основе давно прочитанных данных секвенирования SMRT. Нат Методы. 2013;10(6):563–569.. doi: 10.1038/nmeth.2474. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

83. Quinlan AR, Hall IM. BEDTools: гибкий набор утилит для сравнения геномных признаков. Биоинформатика. 2010;26(6):841–842. doi: 10.1093/биоинформатика/btq033. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

84. Барбитов Ю.А., Бездворных И.В., Полев Д.Е., Серебрякова Е.А., Глотов А.С., Глотов О.С., Предеус А.В. Выявление скрытых вариаций: систематическая коррекция аннотации референсного минорного аллеля в названии клинического варианта. Генет Мед. 2018;20(3):360–364. doi: 10.1038/gim.2017.168. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

85. Мокри М., Фейтсма Х., Нейман И.Дж., де Брюйн Э., ван дер Зааг П.Дж., Гурьев В., Куппен Э. Точное обнаружение SNP и мутаций путем целевого обогащения генома на основе пользовательских микрочипов библиотек для секвенирования коротких фрагментов. Нуклеиновые Кислоты Res. 2010;38(10):e116. doi: 10.1093/nar/gkq072. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

86. Galardini M, Biondi EG, Bazzicalupo M, Mengoni A. CONTIGuator: инструмент окончательной обработки бактериальных геномов для структурного понимания черновых геномов. Исходный код Biol Med. 2011;6(1):11. дои: 10.1186/1751-0473-6-11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

87. Хант М., Сильва Н.Д., Отто Т.Д., Паркхилл Дж., Кин Дж.А., Харрис С.Р. Circlator: автоматическая циркуляризация сборок генома с использованием длинных чтений секвенирования. Геном биол. 2015;16(1):294. doi: 10.1186/s13059-015-0849-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

88. Zerbino DR and Birney E: Velvet: алгоритмы для новой сборки коротких чтений с использованием графов де Брейна. Исследование генома 18(5):821-829. 10.1101/гр.074492.107. [Бесплатная статья PMC] [PubMed]

89. Хант М., Кикучи Т., Сандерс М., Ньюболд С., Берриман М., Отто Т.Д. REAPR: универсальный инструмент для оценки сборки генома. Геном биол. 2013;14(5):R47. doi: 10.1186/gb-2013-14-5-r47. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

90. Курц С., Филлиппи А., Делчер А.Л., Смут М., Шамуэй М., Антонеску С., Зальцберг С.Л. Универсальное и открытое программное обеспечение для сравнения больших геномов. Геном биол. 2004;5(2):R12. doi: 10.1186/gb-2004-5-2-r12. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

91. Busch A, Homeier-Bachmann T, Abdel-Glil MY, Hackbart A, Hotzel H, Tomaso H. Использование кластеризации аффинного распространения для идентификации бактериальных клад и субклады с полногеномными последовательностями Francisella tularensis. PLoS Negl Trop Dis. 2020;14(9):e0008018. doi: 10.1371/journal.pntd.0008018. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

92. Кирс М., Мойр Р., Уилсон А., Стоунз-Хавас С., Чунг М., Старрок С., Бакстон С., Купер А., Марковиц С., Дюран С. , Thierer T, Ashton B, Meintjes P, Drummond A. Geneious basic: интегрированная и расширяемая настольная программная платформа для организации и анализа данных о последовательностях. Биоинформатика. 2012;28(12):1647–1649. doi: 10.1093/биоинформатика/bts199. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

93. Боденхофер У., Котмайер А., Хохрайтер С. APCluster: пакет R для кластеризации аффинного распространения. Биоинформатика. 2011;27(17):2463–2464. doi: 10.1093/биоинформатика/btr406. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

94. Fischer S, Freuling CM, Müller T, Pfaff F, Bodenhofer U, Höper D, Fischer M, Marston DA, Fooks AR, Mettenleiter TC, Conraths FJ, Homeier-Bachmann T. Определение целевых кластеров для последовательностей вируса бешенства с использованием кластеризации аффинного распространения. PLoS Negl Trop Dis. 2018;12(1):e0006182. doi: 10.1371/journal.